1. Metode smear adalah metode untuk menyiapkan slide dengan melapisi material secara merata pada slide kaca.
Bahan-bahan noda termasuk organisme sel tunggal, ganggang kecil, darah, cairan kultur bakteri, jaringan longgar hewan dan tumbuhan, testis, kepala sari, dll.
Saat mengolesi, berikut ini harus dicatat: (1) Slide kaca harus bersih. (2) Geser kaca harus rata. (3) Lapisan harus seragam. Jatuhkan cairan apusan di sisi kanan tengah geser kaca dan sebarkan secara merata dengan pisau pisau bedah atau tusuk gigi. (4) Lapisan harus tipis. Gunakan slide kaca lain sebagai pendorong dan dorong dengan lembut dari kanan ke kiri di sepanjang permukaan slide kaca dengan cairan apusan (sudut antara dua slide kaca harus 30 derajat -45 derajat) untuk membentuk lapisan tipis yang seragam. (5) Fiksasi. Jika fiksasi diperlukan, fiksatif kimia atau metode pengeringan (bakteri) dapat digunakan untuk fiksasi. (6) Pewarnaan. Methylene Blue digunakan untuk bakteri, noda Wright digunakan untuk darah, dan yodium terkadang dapat digunakan. Cairan pewarnaan harus menutupi seluruh permukaan apusan. (7) Bilas. Keringkan dengan kertas penyerap atau panggang kering. (8) Sealing. Untuk penyimpanan jangka panjang, gunakan permen karet Kanada untuk menyegel slide.
2. Metode penekan adalah metode penempatan bahan biologis antara slide dan slip penutup, menerapkan tekanan tertentu, dan memeras sel -sel jaringan terpisah.
3. Metode pemasangan adalah metode penyegelan bahan biologis secara keseluruhan untuk membuat spesimen slide. Metode ini dapat digunakan untuk membuat slide sementara atau permanen.
Bahan -bahan untuk slide pemasangan meliputi: mikroorganisme seperti Chlamydomonas, Spirogyra, Amoeba, Nematoda; hydra, epidermis daun tanaman; Sayap serangga, kaki, mulut, sel epitel oral manusia, dll.
Saat membuat metode pemasangan, perhatikan yang berikut: (1) Saat memegang slide, pastikan untuk tetap rata atau letakkan di platform. Saat meneteskan air, jumlah air harus sesuai, sehingga hanya ditutupi oleh slip penutup. (2) Bahan harus disebarkan dengan jarum pembedah atau pinset tanpa tumpang tindih dan diratakan pada bidang yang sama. (3) Saat menempatkan slip penutup, tutup perlahan -lahan pada tetesan air dari satu sisi untuk mencegah gelembung. (4) Saat pewarnaan, jatuhkan setetes cairan pewarnaan di satu sisi penutup dan serap dari sisi lain dengan kertas penyerap untuk membuat spesimen di bawah penutup penutup merata. Setelah pewarnaan, gunakan metode yang sama untuk menjatuhkan setetes air bersih, menyerap cairan pewarnaan, dan amati di bawah mikroskop.
4. Bagian adalah spesimen geser yang terbuat dari irisan tipis yang dipotong dari organisme.
Karena persyaratan yang berbeda, Anda dapat menggunakan pisau untuk mengiris dengan tangan, atau menanamkan blok jaringan dalam parafin atau collodion atau membekukannya pada suhu rendah dan mengirisnya dengan mikrotom. Potong menjadi 5-10 irisan mikron untuk pengamatan mikroskop optik. Irisan ultra-tipis yang dipotong dari blok jaringan yang tertanam dalam resin epoksi atau asam metakrilat memiliki ketebalan nanometer 20-50 dan secara khusus untuk pengamatan di bawah mikroskop elektron. Bagian ujung dan batang akar yang digunakan untuk pengajaran umum umumnya disebut bagian parafin.